心脏毒素主要存在于眼镜蛇科的眼镜蛇毒、金环蛇毒和响尾蛇科的菱斑响尾蛇毒中。 在动物实验中可见到心脏毒素选择性地作用于心脏，使心脏在短暂的兴奋后转入抑制，对 蛙心最后使之停止于跳动的收缩期，对狗、猫等动物最后引起心室纤维震颤。心脏毒素对 心肌作用以致心跳停止时，虽经生理盐水多次冲洗，也难以使之恢复跳动。心脏毒素的作 用是直接损坏心肌。实验证明心脏毒素是一种专一性地作用于心肌细胞的多肽类毒素，造 成心肌细胞膜的构造变化而使一部分膜受磷酸酯酶的攻击。所以，心脏毒素可直接作用于 心肌，也能降低血压，造成持久的收缩期收缩。心脏毒素的作用能被钾离子所逆转。
心脏毒素的毒性要比神经毒素小得多，如眼镜蛇心脏毒素的致死强度在给小鼠腹腔 注射时只有神经毒素的1/20,给猫静脉注射时，其致死强度也比神经毒素要小一半左右。
心脏毒素的鉴定可用离体器官法，也可用整体动物法。如离体蛙心灌注法，可观察到 心脏在短暂的兴奋后转入抑制，最后心跳停止于收缩期。用猫作整体实验时可见到收缩压 下降，心电图异常改变:P-R间期延长，QRS波幅降低，S-T段、T波改变，室性期前收缩，
完全性A-V阻断及室性节律等。这是由于心脏毒素能使心肌细胞膜产生不可逆的去极 化，最终损害器官功能，故其毒理作用非常广泛。
(―)心血管效应的测定
整体实验:大鼠用20%乌拉坦(5ml/kg)经腹腔麻醉，行右颈总动脉插管逆行进入左 心室，经换能器由四导生理记录仪(Sanei G362型）记录左心室内压(LVESP)，左心室内 压较大升降速度（士LVdp/dtmax);由股动脉插管描记血压，同时记录心电测定心率(HR)。 术后稳定20min，由股静脉注射样品，观察心功能变化。
离体实验:用乌拉坦麻醉大鼠，由股静脉注射0. 2ml 0. 3%肝素，开胸速取心脏，悬挂 于Langendorff灌流装置上，从主动脉逆行灌流95%02、5% C02平衡的Krebs-Henseleit 液(K-H液），灌流速度6ml/min。通过主动脉和左心室导管，经换能器在生理多导仪上监 测LVESP 士LVdp/du^，:HR及主动脉灌流压(PP)。预灌流15min后，加样品到液灌流 中，观察灌流前后的变化。
(二） 大鼠尾动脉套管的埋植及血压和心率的记录
大鼠用戊巴比妥钠(30mg/kg i.p)麻醉，沿尾根腹侧正中向后切开约7cm，分离出尾 中心动脉，插入聚乙烯套管(外径0. 6mm)，结扎固定。套管内保留0. 2ml 1 %的肝素，以防 凝血。将套管末端封住后埋于大鼠尾部皮下，缝合切口，次日待用。将术后24h已完全清 醒的大鼠固定于塑料笼内，用普鲁卡因浸润尾部切口后，取出动脉套管，将其连至插入式 血压换能器，经自动平衡记录仪描记。同时，用心电图仪记录大鼠心率。血压和心率的基 础值分别为 14. 27±0. 53kPa(107±4mmHg)和 488±23 次/min。
(三） 家兔耳动脉套管的埋植及血压的记录
用普鲁卡因浸润兔耳中心动脉周围皮肤，切开皮肤，分离耳中心动脉，插入聚乙烯套 管(外径0.6mm)，结扎固定，管内保留0.2ml 1%的肝素以防凝血，待用。术后30min将耳 中心动脉的套管的一端连至插入式血压换能器，经自动平衡记录仪记录血压。血压的基础 值为 11. 2士0. 4kPa(84±3mmHg)。
(四） 培养鸡胚心肌细胞
培养鸡胚心肌细胞搏动的观察按李连达(1980)等所建立的培养方法进行。用这种方 法来测定蛇毒中心脏毒素的作用强度是一种好方法。将鸡胚心肌细胞在含有2mol/L Ca- Cl2浓度的细胞培养液中培养3天〜5天，选取搏动节律正常的细胞因子2簇〜3簇(即具 有稳定的搏动频率40次/min〜80次/min)，放在倒置显微镜恒温装置内，观察有或无心 脏毒素存在时的情况，间隔5min或lOmin测1次每分钟的搏动次数、节律、强度及形态 变化。取3次观察的实验数据的平均值作图。
